Contaminación de las paredes internas de las jeringuillas utilizadas para la preparación y administración de medicamentos peligrosos
Resumen Introducción:
Evaluar la contaminación de las paredes internas de las jeringuillas de barril utilizadas para la preparación y administración de fármacos peligrosos mediante muestreo con toallitas.
Propósito
El objetivo del estudio era medir la contaminación en las paredes interiores de las jeringuillas utilizadas para la preparación de medicamentos peligrosos. Dado que las jeringuillas tienen una conexión abierta con el medio ambiente, la evaporación de los fármacos podría dar lugar a una contaminación ambiental y a una posible exposición del personal sanitario.
Métodos
Se recogieron 43 jeringas BD Plastipak luer lock de 50 ml después de su uso único en la preparación de medicamentos peligrosos. Se limpió la pared interior del cilindro de cada jeringa. También se midió la posible contaminación restante mediante extracción de líquidos para verificar la eficacia del procedimiento de limpieza. Se analizaron seis medicamentos peligrosos. Para el análisis de ciclofosfamida, doxorrubicina, 5-fluorouracilo, ifosfamida y metotrexato se utilizó cromatografía líquida y espectrometría de masas en tándem. El análisis de platino del cisplatino se realizó mediante voltamperometría.
Resultados
Se detectó contaminación en todas las jeringas de ciclofosfamida, doxorrubicina, ifosfamida y metotrexato, en ocho de cada diez jeringas de 5-fluorouracilo y en ninguna de las jeringas de cisplatino. La contaminación como parte de la dosis transferida difiere entre los medicamentos mostrando la mayor contaminación para la doxorrubicina (mediana 21,90 ppm) seguida de la ciclofosfamida (mediana 1,24 ppm), y la ifosfamida (mediana 0,60 ppm). La contaminación más baja se registró en el caso del 5-fluorouracilo (mediana de 0,02 ppm) y el metotrexato (mediana de 0,006 ppm).
Conclusión
Se encontró contaminación en casi todas las jeringuillas y difiere entre los fármacos, lo que indica que algunos fármacos se adhieren más a las paredes internas y a los vástagos de los émbolos que otros. La contaminación implica un riesgo potencial de exposición, ya que los fármacos peligrosos podrían evaporarse de las jeringuillas abiertas, contaminar el entorno de trabajo y exponer al personal sanitario.
Introducción
Cuando se llena una jeringa con un medicamento peligroso durante el proceso de composición, la pared interior de la jeringa entra en contacto con el medicamento, que puede reaccionar y adherirse a la superficie. Después de transferir el HD a una bolsa de infusión o a un depósito de la bomba, o después de administrarlo como inyección en bolo, se crea una conexión abierta entre la pared interior de la jeringa y el entorno. En consecuencia, los HD pueden evaporarse y contaminar potencialmente el entorno de trabajo. Además, el émbolo de la jeringa puede contaminarse por contacto con la pared interior de la jeringa. El fármaco también puede transferirse al émbolo durante la manipulación de la jeringa. Esto puede incluso aumentar si la jeringa se utiliza para múltiples manipulaciones, como se observa en la práctica diaria, por ejemplo, si el volumen de la composición supera el volumen máximo de la jeringa. Incluso durante la producción por lotes y por bandas de dosis, es habitual reutilizar las jeringas varias veces. La contaminación del émbolo podría transferirse finalmente a otras superficies a través de los guantes del personal de farmacia, enfermeras y otros trabajadores sanitarios, lo que daría lugar a la propagación de la contaminación en el entorno de trabajo y a una posible exposición de los trabajadores. Obviamente, esto debe evitarse en la medida de lo posible.
Incluso después de la preparación y la administración, cuando las jeringuillas se desechan, el proceso de evaporación continuará dando lugar a contaminación en el contenedor de residuos de HD y sus alrededores. Si las jeringuillas no se desechan correctamente (bien envueltas o selladas), el personal que participa en el transporte y la manipulación de residuos podría estar expuesto.
La contaminación de las jeringas utilizadas durante la preparación de fármacos se ha investigado anteriormente, pero los estudios se centraban principalmente en la contaminación de los émbolos. En 2005, Favier et al. detectaron ciclofosfamida en los émbolos de todas las jeringas Becton Dickinson® analizadas.1 En 2010, Kiffmeyer repitió el estudio con jeringas Becton Dickinson®, Terumo® y Equashield®.2 Se realizaron dos, cuatro u ocho manipulaciones con cada jeringa. La mayor contaminación por ciclofosfamida se encontró en los émbolos de las jeringas Becton Dickinson®. En una prueba separada, también se detectó ciclofosfamida en las paredes internas de casi todas las jeringas Becton Dickinson® y Terumo®. En 2014, Smith et al. realizaron un estudio comparable y compararon la contaminación del émbolo de las jeringas Becton Dickinson® y Equashield®.3 Se realizaron dos, cuatro u ocho manipulaciones para cada jeringa.
Se observó una contaminación por ciclofosfamida significativamente mayor en las jeringas Becton Dickinson® en comparación con las jeringas Equashield®. Sin embargo, la ejecución y el resultado del estudio fueron cuestionados y debatidos, ya que el estudio no reflejaba las condiciones rutinarias de preparación de compuestos (manipulaciones múltiples), el análisis estadístico fue cuestionado, faltaban controles y el tamaño de las muestras era diferente.4-6 Recientemente, Barta et al. cuantificaron la contaminación por HD en las paredes internas de jeringas de barril abierto estándar conectadas al dispositivo de transferencia de fármacos de sistema cerrado (CSTD) PhaSeal® de Becton, Dickinson and Company. Se realizaron manipulaciones únicas para fifteen jeringas de 5-fluorouracilo, ciclofosfamida e ifosfamida. Las paredes internas de las cuarenta y cinco jeringuillas estaban contaminadas tras la transferencia del fármaco del vial a la jeringuilla y de ésta a la bolsa intravenosa.7 En conclusión, todos los estudios muestran contaminación por EH en los émbolos y las paredes internas de las jeringuillas de barril abierto tras la preparación de compuestos, lo que indica un riesgo potencial de contaminación ambiental y exposición de los trabajadores sanitarios.
El objetivo de nuestro estudio era evaluar la contaminación de las paredes internas de las jeringuillas utilizadas para la preparación de un solo uso de HD mediante un muestreo con toallitas y realizar pruebas para detectar más HD. Las jeringuillas para la preparación o manipulación de un solo uso se consideran una práctica diaria. Se seleccionaron jeringas de ciclofosfamida, ifosfamida, 5-fluorouracilo, doxorrubicina, metotrexato y cis-platino, que representaban HD con diferentes propiedades físicas y químicas, como concentración, volatilidad, viscosidad y afinidad con las superficies de las jeringas.
Materiales y métodos
El estudio fue realizado por Exposure Control Sweden AB (Bohus-Björkö, Suecia).
HD syringes tested
Se recogieron 43 jeringas BD Plastipak luer lock de 50 ml en el departamento de farmacia de los Hospitales Universitarios de Lovaina en Bélgica (Tabla 1). Las jeringuillas son jeringuillas de cilindro abierto que se utilizan con frecuencia para la preparación de HD. Las jeringuillas se recogieron tras la preparación de HD de un solo uso. Los fármacos se transfirieron de los viales a través de las jeringas a las bolsas de infusión utilizando ChemoClave y Spiros CSTD (ICU Medical, San Clemente, EE.UU.). Los volúmenes de fármaco transferidos variaron de 36 a 60 mL. Catorce operadores (farmacéuticos y técnicos de farmacia) participaron en la preparación de las jeringas.
No se permitió tocar los vástagos de los émbolos para evitar la contaminación de las paredes internas de las jeringas causada por los guantes de los operarios durante la preparación. Sólo se utilizó el pomo externo del extremo del émbolo para sujetarlo. Para comprobar que no se tocaba el vástago del émbolo, se analizaron también las muestras de toallitas para otros nueve EH, además del fármaco manipulado y transferido, excepto para el cisplatino, ya que el procedimiento de limpieza de la muestra y el análisis eran diferentes en comparación con los otros cinco EH analizados. De este modo, se pudo determinar la posible transferencia de contaminación por los guantes de los operarios a las jeringuillas preparadas.
Se probaron seis HD porque las propiedades físicas y químicas de los fármacos difieren y esto podría producir resultados diferentes. Sólo se recogieron jeringuillas de 50 ml para las pruebas, a fin de permitir un acceso cómodo con las toallitas. Teniendo en cuenta el requisito de 50 ml, se incluyeron en el estudio los siguientes HD: 5-fluorouracilo (50 mg/mL), ciclofosfamida (20 mg/mL), ifosfamida (40 mg/mL), metotrexato (100 mg/mL), doxorrubicina (2 mg/mL) y cisplatino (1 mg/mL). Se recogieron de dos a diez jeringas de cada HD, dependiendo de la disponibilidad de las jeringas durante el periodo de recogida.
Tras la transferencia del fármaco, las jeringas se envasaron individualmente y se sellaron en una minibolsa de plástico. Las jeringas seguían conectadas al Spiros CSTD para evitar derrames con los HD. A cada jeringa se le asignó un código único y se registraron los detalles (Tabla 1). Las jeringas se almacenaron a 2-8°C hasta el muestreo de toallitas, la preparación de muestras y el análisis en Exposure Control Sweden AB.
Procedimiento de muestreo con toallitas
Para el muestreo con toallitas de superficie se utilizaron los Cyto Wipe Kits de Exposure Control Sweden AB (www.exposurecontrol. net). Para realizar un muestreo adecuado, la toallita original (45 cm×24 cm) se enrolló en una toallita en forma de cilindro de 12 cm de longitud y aproximadamente 1 cm de diámetro para facilitar la entrada en el barril (Figura 1). El émbolo se ajustó a 10 ml para tener acceso suficiente a la jeringa y poder tomar la muestra de la toallita y evitar el contacto con el eje del émbolo. Por consiguiente, no se limpió la pared interior entre 0 y 10 ml. Después de colocar la toallita en la jeringa, ésta se colocó en posición vertical y se gotearon 5 ml de solución de ácido fórmico al 0,1% o 5 ml de solución de HCL 0,5 M (para cisplatino) sobre la toallita. A continuación, se giró el émbolo para asegurarse de que la toallita previamente humedecida entraba en contacto con toda la superficie de la pared interior de la jeringa.
Se recogieron las toallitas previamente humedecidas y se extrajeron con 20 ml de solución de ácido fórmico al 0,1%. Para el cisplatino se utilizaron 20 ml de solución de HCL 0,5 M. El volumen total de extracción para las muestras de toallitas fue de 25 mL. Tras la extracción, se utilizó una parte del extracto para el análisis.
También se midió la contaminación restante en las paredes interiores de las jeringas después de limpiarlas para verificar la eficacia del procedimiento de limpieza. Para ello, se colocaron las jeringas en posición vertical con el émbolo todavía ajustado a 10 ml, y se vertieron 50 ml de solución de ácido fórmico al 0,1% en el espacio entre el cilindro y el émbolo.2 Para las jeringas de cisplatino, se utilizaron 50 ml de solución de HCL 0,5 M. Los líquidos se retiraron al cabo de 60-90 min y se analizaron por separado de las muestras limpiadas. Los líquidos se retiraron al cabo de 60-90 min y se analizaron por separado de las muestras de toallitas.
Las muestras de toallitas y los líquidos también se analizaron para otros nueve fármacos además del fármaco manipulado y transferido, excepto para el cisplatino, ya que el procedimiento de limpieza de la muestra y el análisis fueron diferentes en comparación con los otros five fármacos analizados.



Figura 1 Toallita en forma de cilindro y jeringa con toallita en forma de cilindro dentro del cilindro
Cromatografía líquida con análisis de espectrometría de masas en tándem
Se utilizó cromatografía líquida con espectrometría de masas en tándem (LC-MS/MS) para el análisis de ciclofosfamida, doxorrubicina, 5-fluorouracilo, ifosfamida, metotrexato y los otros cinco HD no manipulados y transferidos, pero medidos para comprobar la posible contaminación (cruzada) en el eje del émbolo (citarabina, docetaxel, etopósido, gemcitabina y paclitaxel).El límite de detección es de 0,01 ng/mL para ciclofosfamida, citarabina, gemcitabina, ifosfamida y metotrexato, de 0,2 ng/mL para docetaxel, doxorrubicina y paclitaxel, y de 0,5 ng/mL para etopósido y 5-fluorouracilo.
Análisis voltamperométrico de barrido
El análisis de platino del cisplatino se realizó con voltamperometría de redisolución.9 0,5 mL del extracto se destruyeron utilizando peróxido de hidrógeno, ácido clorhídrico y luz ultravioleta, lo que dio lugar a la formación de iones de platino. Por último, se analizaron los iones de platino en lugar del cisplatino. Las muestras se analizaron por duplicado, incluido el paso de destrucción. Se indican los valores medios. Debido a los niveles de fondo de platino, el límite de cuantificación se fija en 0,1 ng/mL. Esto corresponde a 0,16 ng/mL de cisplatino.
Análisis estadístico
Todos los análisis se realizaron en R (versión 4.4.1) utilizando el paquete de R rstatix (versión 0.7.2) para las pruebas estadísticas y ggplot2 (versión 3.5.1) para la visualización. Se utilizó la prueba no paramétrica de Wilcoxon para comparar la contaminación entre las muestras de toallitas y los líquidos para cada uno de los HD (Tabla 1). La contaminación total en las jeringuillas como parte de la cantidad total de HD transferida y presentada en ppm, también se comparó entre los seis HD utilizando la prueba de Wilcoxon. Los valores p se ajustaron para comparaciones múltiples utilizando el método de Holm. Para los valores inferiores al límite de detección, se utilizó la mitad del límite de detección. Los valores de p inferiores a 0,05 se consideraron significativos.
Resultados
En todas las jeringas de ciclofosfamida, doxorrubicina, ifosfamida y metotrexato se detectó contaminación en las paredes interiores, medida por muestreo con toallitas (Tabla 1). Se detectó 5-fluorouracilo en las paredes interiores de cuatro de cada diez jeringas. La contaminación con platino, que representa el cisplatino, no se detectó en las cuatro jeringas analizadas. Se encontraron resultados comparables para el resto de la contaminación medida en los líquidos, para verificar la eficacia del procedimiento de muestreo con toallitas. De nuevo se detectó contaminación en todas las jeringas de ciclofosfamida, doxorrubicina, ifosfamida y metotrexato, en siete de las diez jeringas de 5-fluorouracilo y en ninguna de las jeringas de cisplatino (Tabla 1).
La contaminación total más elevada (muestras de toallitas y líquidos) se midió en el caso de la doxorrubicina (mediana de 1989 ng), seguida de la ifosfamida (mediana de 1204 ng) y la ciclofosfamida (mediana de 956 ng). La contaminación más baja se registró en el caso del 5-fluorouracilo (mediana de 45 ng) y el metotrexato (mediana de 27 ng). No se detectó cisplatino.
En el caso de la ciclofosfamida, la contaminación fue mayor en los líquidos que en las muestras de toallitas (p = 0,01), mientras que no se encontraron diferencias para los demás HD. Esto indica que el muestreo con toallitas en las paredes interiores no fue eficaz. Un muestreo eficaz de las toallitas habría dado lugar a una mayor contaminación de las muestras de toallitas que de los líquidos.
No se encontró contaminación en las jeringuillas con los otros nueve HD, aparte del HD compuesto, para comprobar la posible transferencia de contaminación por los guantes de los operarios, ni en las muestras de toallitas ni en los líquidos, lo que indica que no hubo contaminación cruzada de HD durante la recogida de las jeringuillas y el muestreo en el laboratorio.
Para comparar la contaminación entre las seis HD, debe calcularse la dosis total de HD transferida para cada una de las jeringas multiplicando la concentración de HD por el volumen transferido. A continuación, se calcula la contaminación como parte de la cantidad total de dosis de HD transferida y se expresa en partes por millón (Tabla 1). Se presentan los valores medios y los intervalos, que se utilizan para el análisis estadístico. La mayor contaminación total se calcula para la doxorrubicina (mediana 21,90 ppm), seguida de la ciclofosfamida (mediana 1,24 ppm) y la ifosfamida (mediana 0,60 ppm). La contaminación total más baja se calcula para el 5-fluorour-acil (mediana 0,02 ppm) y el metotrexato (mediana 0,006 ppm). Se encontró una contaminación significativamente mayor para la doxorrubicina en comparación con la ciclofosfamida, la ifosfamida y el 5-fluorouracilo (p = 0,001), y para la ciclofosfamida (p = 0,0003), y la ifosfamida (p = 0,002), en comparación con el 5-fluorouracilo.
Debate
El objetivo del estudio era medir la contaminación en las paredes interiores de las jeringas mediante muestreo con toallitas. Se detectó contaminación en todas las jeringas de doxorrubicina, metotrexato, ciclofosfamida e ifosfamida. Algunas jeringas de 5-fluorouracilo también estaban contaminadas, pero ninguna de las jeringas de cis-platino. Aunque el objetivo era limpiar las paredes interiores de las jeringuillas, no puede excluirse que la contaminación medida incluya también la del eje del émbolo.
La eficacia del procedimiento de muestreo por frotado se validó midiendo la contaminación restante en las paredes interiores de las jeringuillas tras el frotado. Para ello, se vertió un líquido en la jeringa que permitió disolver la droga restante. Sin embargo, los resultados muestran mayores cantidades de fármacos en los líquidos que en las muestras de las toallitas, excepto en el caso de las jeringuillas de cisplatino, en las que no se encontró contaminación. Esto indica que el procedimiento de muestreo con toallitas fue menos eficaz que el uso del líquido. Además, también podría haber contaminación en los vástagos de los émbolos. Como las toallitas también tocan los vástagos del émbolo, la contaminación en los vástagos del émbolo también se muestreará. Esto también afecta al muestreo con los líquidos.
También se comprobó la contaminación de cada jeringa (excepto la de cisplatino) con otros nueve fármacos para medir la posible transferencia de contaminación por los guantes de los operarios a los vástagos de los émbolos. No se detectó ningún otro fármaco excepto los compuestos. Esto indica que es muy improbable que la contaminación medida en las paredes internas y los ejes de los émbolos de las jeringuillas esté causada por otras actividades (previas) distintas de la propia preparación. También demuestra que las jeringuillas se recogieron correctamente y que las pruebas de limpieza y la recogida de los líquidos en el laboratorio se realizaron sin contaminación.
Debe observarse que las paredes interiores de las jeringas no se limpiaron entre 0 y 10 mL, ya que el émbolo se ajustó a 10 mL para realizar el muestreo por limpieza. Esto indica una subestimación de la contaminación de alrededor del 20% basada en el volumen transferido (mediana 50 mL; rango 36-60 mL).
Los resultados no se corrigieron en función de la recuperación, y sigue sin estar claro si todos los fármacos fueron eliminados por las toallitas o estaban presentes en el líquido. Las pruebas de laboratorio realizadas por duplicado ofrecen algunas indicaciones y muestran recuperaciones altas de ciclofosfamida (96%) e ifosfamida (92%), recuperaciones moderadas de cisplatino (80%), metotrexato (69%) y 5-fluorouracilo (62%), y recuperaciones bajas de doxorrubicina (19%). Esto indica que algunos fármacos se adhieren más a las paredes interiores de las jeringas que otros, especialmente la doxorrubicina. Las diferencias pueden explicarse por las distintas características de los productos, como las propiedades físicas y químicas de los fármacos.
La principal limitación del estudio se refiere a la ineficacia del muestreo con toallitas, pero esto se compensó con la extracción adicional de los HD en las paredes interiores y los ejes de los émbolos. Además, se desconoce si cada HD se evaporará del interior de las jeringas y si finalmente se transferirá como contaminación al medio ambiente.
Algunos fármacos (o partes de ellos) podrían adherirse permanentemente a las paredes internas y a los vástagos de émbolo de las jeringuillas y no se liberarían al medio ambiente. A pesar de estas incertidumbres, la cantidad total de contaminación por EH en las paredes interiores y los vástagos de émbolo de las jeringuillas es relevante, ya que indica un riesgo potencial de contaminación ambiental y exposición de los trabajadores sanitarios. Se ha demostrado la evaporación de las HD a temperatura ambiente, además de la liberación de partículas de HD durante el bombeo.12-16
Teniendo en cuenta la jerarquía de los controles para proteger a los trabajadores de la exposición a los EH, la atención debe centrarse en los controles técnicos (nivel 3) para aislar a los trabajadores de los EH, ya que la eliminación (nivel 1: retirar los EH) y la sustitución (nivel 2: reemplazar los EH) son imposibles10,11 . Los controles administrativos (nivel 4) y, por último, los EPI (nivel 5) son los pasos siguientes, pero se consideran los menos eficaces para proteger al personal sanitario. Las medidas de control técnico, para minimizar la posible propagación de la contaminación desde las paredes internas y los vástagos del émbolo de las jeringuillas al medio ambiente, podrían incluir:
/ Composición de un solo uso de las jeringas (extraer y empujar una vez).
/ Envuelva o selle las jeringas inmediatamente después de su uso. Esto incluye la transferencia de viales en bolsas y depósitos de bomba durante la preparación de compuestos y después de la administración a los pacientes.
/ Asegúrese de que las jeringuillas estén debidamente envueltas o selladas cuando se desechen en un contenedor de residuos peligrosos, para evitar la contaminación por vapores y partículas de residuos de alta definición.
/ No utilice jeringuillas de barril abierto, sino jeringuillas selladas. Siguiendo estas recomendaciones se podría reducir la contaminación ambiental y la posible exposición de los operarios y el personal de enfermería.
Seguir estas recomendaciones podría reducir la contaminación ambiental y la posible exposición de los operarios y el personal de enfermería.
Conclusión
Este estudio ha demostrado que la preparación rutinaria de HD ha dado lugar a la contaminación de las paredes internas y los vástagos de émbolo de las jeringas en cinco de los seis HD analizados. Algunas HD se adhieren más a las paredes internas y a los vástagos de émbolo que otras, lo que da lugar a diferencias de contaminación entre las HD. Sin embargo, lo más importante es que la contaminación de las paredes internas y los vástagos de las jeringuillas podría dar lugar a la liberación de fármacos en el entorno de trabajo y a la exposición del personal sanitario. Este fenómeno debe tenerse en cuenta a la hora de adoptar medidas de gestión de riesgos al manipular los HD.
Agradecimientos
Agradecemos el apoyo estadístico de Björn Andersson y Jari Martikainen (estadísticos del Centro de Bioinformática y Datos de la Academia Sahlgrenska, Universidad de Gotemburgo, Suecia).
Contribuciones de los autores
Todos los autores diseñaron el estudio; PS y BT, recopilaron los datos; PS, realizó el análisis e interpretó los resultados; PS, redactó el manuscrito. Todos los autores revisaron y aprobaron la versión final del manuscrito.
Declaración de intereses conflictos
Los autores declaran no tener conflictos de interés potenciales con respecto a la investigación, autoría y/o publicación de este artículo.
Financiación
Los autores declararon haber recibido el siguiente apoyo financiero para la investigación, autoría y/o publicación de este artículo: Equashield Medical Ltd, Migdal Tefen, Israel, proporcionó apoyo financiero para la investigación y la redacción de esta publicación.
ORCID iD
Paul Sessink https://orcid.org/0000-0002-8580-0044


